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更新时间:2026-06-15
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无论选择哪种探针,设计时都应遵循以下原则以确保实验成功:
长度控制:RNA探针用于杂交时建议150-200个碱基,过长需碱水解以提高组织渗透性;模板质粒长度最好不超过1.5 k。-
特异性:探针序列应与靶标RNA高度互补,与其他基因无明显匹配,通常GC含量控制在40%-60%-。
方向确认:用于检测的反义探针与靶标互补;做阴性对照的正义探针与靶标序列相同-。
这是实验室常用的方法之一,尤其是制备(DIG)标记的探针-。
1. 前期准备:获取模板
模板扩增:通过PCR扩增或质粒扩增获取包含目标序列的DNA片段-。
载体克隆:将该片段克隆至含SP6、T7或T3启动子的专用载体(如pGEM-T)上。
2. 核心步骤:质粒线性化
酶切:选择合适的限制性内切酶,在目标序列的下游将环状质粒切开,得到线性的DNA模板,这能确保转录在目标序列处终止-。
纯化:通过酚氯仿抽提和乙醇沉淀去除酶和杂质,得到纯净的模板-。
3. 关键步骤:体外转录与标记
体系配置:在无RNase的离心管中混合线性化模板、RNA聚合酶、缓冲液和DIG-RNA标记混合液(含DIG标记的UTP)。
反应:37℃孵育约2小时,RNA聚合酶会以DNA为模板合成大量掺入DIG标记的RNA探针-。
4. 后处理:纯化与水解
去除模板:加入无RNase的DNase I,消化掉作为模板的DNA-。
探针水解:若探针过长,需在60℃用碳酸盐缓冲液水解至理想长度,然后通过乙醇沉淀浓缩回收-。